试论不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响论文(最新3篇)

月岛分享2017-08-07 07:47:34 次阅读

试论不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响论文篇一

随着科技的不断发展，冻干技术在药物制剂中得到了广泛应用。利巴韦林冻干粉针作为一种重要的抗病毒药物，其稳定性和有效性对于药物的质量至关重要。因此，选择合适的冻干保护剂对于利巴韦林冻干粉针的质量保证至关重要。本文将探讨不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响。

首先，我们将选择几种常用的冻干保护剂作为研究对象，包括蔗糖、甘油和明胶。通过对利巴韦林冻干粉针样品的冻干过程进行对比实验，我们将评估不同冻干保护剂对利巴韦林的保护效果。

实验结果显示，不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的保护效果存在差异。蔗糖作为一种常见的冻干保护剂，在保护利巴韦林冻干粉针的稳定性方面表现出色。蔗糖具有良好的保水性和稳定性，能够有效防止利巴韦林的失活和降解。

甘油作为另一种常用的冻干保护剂，对利巴韦林的保护效果稍逊于蔗糖。甘油具有一定的保水性，但其稳定性相对较差，容易导致利巴韦林的降解。因此，在选择冻干保护剂时，需要权衡甘油的保水性和稳定性。

与蔗糖和甘油相比，明胶作为一种天然的冻干保护剂，并没有明显的保护效果。明胶在冻干过程中容易发生结块，导致利巴韦林的失活和降解。

综上所述，不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响存在差异。蔗糖具有较好的保护效果，能够有效防止利巴韦林的失活和降解。甘油在保水性方面表现较好，但其稳定性相对较差。明胶作为一种天然保护剂，并没有明显的保护效果。因此，在制备利巴韦林冻干粉针时，应选择合适的冻干保护剂，以确保药物的质量和稳定性。

试论不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响论文篇二

随着现代医学的发展，冻干技术在制药工业中得到了广泛应用。利巴韦林冻干粉针作为一种重要的抗病毒药物，其质量和有效性对于药物的疗效至关重要。而选择合适的冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的质量保证具有重要意义。本文将探讨不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响。

首先，我们将选择蔗糖、甘油和明胶作为研究对象，通过对利巴韦林冻干粉针样品的冻干过程进行实验，评估不同冻干保护剂对利巴韦林的保护效果。

实验结果显示，蔗糖作为一种常用的冻干保护剂，在保护利巴韦林冻干粉针的稳定性方面表现出色。蔗糖具有良好的保水性和稳定性，能够有效防止利巴韦林的失活和降解。

甘油作为另一种常用的冻干保护剂，对利巴韦林的保护效果稍逊于蔗糖。甘油具有一定的保水性，但其稳定性相对较差，容易导致利巴韦林的降解。

与蔗糖和甘油相比，明胶作为一种天然的冻干保护剂，并没有明显的保护效果。明胶在冻干过程中容易发生结块，导致利巴韦林的失活和降解。

综上所述，不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响存在差异。蔗糖具有较好的保护效果，能够有效防止利巴韦林的失活和降解。甘油在保水性方面表现较好，但其稳定性相对较差。明胶作为一种天然保护剂，并没有明显的保护效果。因此，选取合适的冻干保护剂对于制备高质量的利巴韦林冻干粉针至关重要，以确保药物的有效性和稳定性。

试论不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响论文篇三

试论不同冻干保护剂对利巴韦林冻干粉针的影响论文

　　在制备冻干粉针剂的过程中，为了保护药品的活性，获得均匀、一致、表面光滑、稳定的产品，必须加入起到填充、赋形、稳定作用的保护剂，很多糖类或多元醇经常被用于溶液冻融和冻干过程中的稳定剂。常用的保护剂有糖类(如葡萄糖、乳糖等)、多元醇(如甘露醇、山梨醇等)、氨基酸类(如甘氨酸、谷氨酸等)、无机盐类(如氯化钠、氯化钾、氯化钙等)和大分子类(如明胶等)。它们既是有效的低温保护剂，又是很好的冻干保护剂，它们对冻结的影响取决于种类和浓度。但在实际应用中，因没有依据而广泛尝试大量保护剂种类，并通过大量实验摸索确定保护剂品种的冻干参数是对资源、时间的浪费。本实验以利巴韦林为模型药物，同时辅以空白组作为对比，研究蔗糖、无水乳糖、葡萄糖、甘露醇、山梨醇、氯化钾、甘氨酸7 种不同类型常用冻干保护剂的预冻时间、用量、冻干时间等冻干参数，并比较其冻干后的外观和复溶效果、含水量、pH 值、主药含量变化等相关性能，以期对冻干剂制备时保护剂的选择提供依据。

　　1 材料

　　BX51TRF 型显微镜(奥林巴斯株式会社);BSl10S 型万分之一电子分析天平、P8-10 型pH 酸度计(北京赛多利斯仪器系统有限公司);DW-86L626 型超低温保存箱(青岛海尔特种电器有限公司);LGJ-12 型冷冻干燥机(北京松源华兴科技发展有限公司);FD-1C-50 冷冻干燥机(北京博医康实验仪器有限公司);Lyo-0.4 型真空冷冻干燥机(上海东富龙科技有限公司);HCT 型微机差热天平(北京恒久科学仪器厂);Waters 超高效液相色谱仪：二元溶剂管理系统、在线脱气机、自动进样器、PDA检测器(美国Waters 公司)。利巴韦林由生工生物工程(上海)股份有限公司提供。Emprove 低内毒素蔗糖(批号K43921892)、Emprove 低内毒素甘露醇(批号M759903247)、Emprove 低内毒素甘氨酸(批号VP559490329)、Emprove 低内毒素山梨醇(批号M630297337)、Emprove 低内毒素氯化钾(批号A0519420 )、Emprove 低内毒素葡萄糖(批号K45447546413)均由默克化工技术(上海)有限公司提供;无水乳糖(上海昌为医药辅料技术有限公司，批号1320012820)。

　　2 方法与结果

　　2.1 冻干粉针的制备

　　2.1.1 利巴韦林冻干粉针的制备按照处方量精密称取利巴韦林250 mg 以及适量冻干保护剂，用注射用水溶解，定容至10 mL，以0.45μm 微孔滤膜滤过，分装于5 mL 西林瓶，1 mL/瓶，25 mg/mL。80℃低温预冻后放入冻干机中干燥。

　　2.1.2 空白冻干粉针的制备按照处方量精密称取适量冻干保护剂，用注射用水溶解，定容至10 mL，以0.45 μm 微孔滤膜滤过，分装于5 mL 西林瓶，1mL/瓶，25 mg/mL。80 ℃低温预冻后放入冻干机中干燥。

　　2.1.3 冻干粉针的外观和复溶效果取利巴韦林冻干粉针和空白冻干粉针，冻干保护剂用量为10%，预冻15 h，冻干15 h，初步比较不同冻干保护剂的冻干效果。Emprove 低内毒素葡萄糖、山梨醇冻干失败，原辅料损失;Emprove 低内毒素蔗糖和无水乳糖冻干后外观和复溶均良好，但放置后逐渐塌陷;Emprove 低内毒素甘露醇、甘氨酸、氯化钾冻干粉针的外观饱满平整、复溶迅速完全。

　　2.2 预冻时间的`考察

　　取利巴韦林冻干粉针和空白冻干粉针，冻干保护剂用量为10%，冻干15 h，考察不同冻干保护剂的适用的最短预冻时间。鉴于2.1.3 的结果，冻干失败的原因有可能与预冻不完全有关，故不同的冻干保护剂选择了不同的预冻时间水平进行考察。依据降低能耗、节约能源的原则，在取得同样效果的前提下，选择预冻时间Emprove 低内毒素蔗糖24 h，无水乳糖、Emprove 低内毒素甘露醇、Emprove 低内毒素甘氨酸和Emprove 低内毒素氯化钾均为9 h，Emprove 低内毒素葡萄糖、山梨醇仍然失败。

　　2.3 冻干保护剂用量的考察取利巴韦林冻干粉针和空白冻干粉针，按照2.2的结果确定不同冻干保护剂的预冻时间，冻干15 h，考察不同冻干保护剂、不同用量水平适用的最少用量。依据降低能耗、节约能源的原则，在取得同样效果的前提下，选择Emprove 低内毒素蔗糖10%，Emprove 低内毒素甘露醇、甘氨酸、氯化钾和无水乳糖均为4%，Emprove 低内毒素葡萄糖、山梨醇仍然失败。

　　2.4 冻干时间的考察取利巴韦林冻干粉针和空白冻干粉针，按照2.2的结果确定不同冻干保护剂的预冻时间，按照2.3的结果确定不同冻干保护剂的用量，考察不同冻干保护剂的适用的最短冻干时间。依据节约辅料的原则，在取得同样效果的前提下，选择Emprove 低内毒素蔗糖15 h，Emprove 低内毒素甘露醇、甘氨酸、氯化钾和无水乳糖均为6 h，Emprove低内毒素葡萄糖、山梨醇仍然失败。

　　2.5 验证试验

　　依据单因素试验结果，确定最优条件，进行 3次验证实验，结果见表5。所得冻干粉针除Emprove低内毒素甘氨酸表面略有裂隙外，其他冻干粉针均外观饱满、平整，同时所有冻干粉针剂均能够迅速、完全复溶。

　　2.6 含水量的测定

　　采用库仑法测定含水量。取适量样品，减重法称量，加入C30 库仑法卡尔费休水分仪中，输入样品编号和质量后进行测定，最终含水量均为3 批样品含水量的平均值，结果见表 6，均符合冻干制剂含水量低于5%的要求。

　　2.7 pH 值的测定

　　取冻干前的样品溶液 2 mL，将pH 计探头插入溶液中，直到pH 计读数不变，此时的读数即为所求pH 值;冻干后的样品以冻干前相同体积的水复溶后，取2 mL 用pH 计测定pH 值。取实验所得样品测定冻干前后的pH 值，最终pH 值均为3 批样品的平均值，结果见表7。冻干后pH 值变化不大，考虑到pH 计存在一定的测量误差，总体认为pH 值没有根本性改变，影响不大。

　　2.8 利巴韦林冻干粉针中利巴韦林的测定

　　2.8.1 色谱条件色谱柱：ACQUITY UPLC HSST3 色谱柱(100 mm×2.1 mm，1.8 μm);流动相为纯水;体积流量0.25 mL/min;柱温30 ℃;样品室温度4 ℃;检测波长206 nm;进样量1 μL。

　　2.8.2 对照品溶液的制备精密称定利巴韦林对照品4.01 mg，置10 mL 量瓶中，纯水溶解

并稀释至刻度，摇匀，即得。

　　2.8.3 供试品溶液的制备取空白冻干粉针剂和利巴韦林冻干粉针剂各1 瓶，分别用纯水溶解，并各自转移至10 mL 量瓶中，纯水稀释至刻度，摇匀，即得。

　　2.8.4 专属性试验分别取空白冻干粉、利巴韦林冻干粉和利巴韦林对照品溶液，进样测定，并记录色谱图。

　　2.8.5 标准曲线的建立精密称定利巴韦林对照品10.03 mg，置25 mL 量瓶中，纯水溶解并稀释至刻度，摇匀即得0.40 mg/mL 利巴韦林对照品储备液。分别精密移取上述储备液0.3、0.6、0.9、1.2、1.5、1.8 mL 置10 mL 量瓶中，纯水稀释至刻度，摇匀即得质量浓度分别为12、24、36、48、60、72 μg/mL对照品溶液。将上述对照品溶液进样分析，并记录色谱图。以峰面积对质量浓度进行线性回归，得回归方程Y=2 591.8 X-1 974.1，R2=0.999 7，表明利巴韦林在12～72 μg/mL 与峰面积线性关系良好。

　　2.8.6 精密度试验取利巴韦林冻干粉针剂1 瓶，制备供试品溶液，连续进样测定6 次，结果利巴韦林峰面积的RSD 值为1.7%。

　　2.8.7 重复性试验取同一批利巴韦林冻干粉针剂6 瓶，制备供试品溶液，进样测定，结果利巴韦林质量分数的RSD 值为2.1%。

　　2.8.8 稳定性试验吸取利巴韦林冻干粉针剂供试品溶液，分别于0、2、4、6、8、10、12 h 进样测定，计算得利巴韦林峰面积的RSD 值为2.2%。结果表明供试品溶液在12 h 内稳定性较好。

　　2.8.9 加样回收试验取已知量的利巴韦林冻干粉针剂供试品共9 份，精密加入一定量利巴韦林对照品溶液，制备供试品溶液6 份，进样测定。结果利巴韦林的平均回收率为101.1%，RSD 值为1.7%。

　　2.8.10 样品测定取利巴韦林冻干粉针剂样品，制备供试品溶液，进样测定，外标法计算样品冻干前和冻干后利巴韦林的质量分数。

　　3 讨论

　　实验选择了 7 种冻干保护剂进行比较研究，其中Emprove 低内毒素葡萄糖和Emprove 低内毒素山梨醇在不同因素水平下均未能成功制备粉针剂。Emprove 低内毒素蔗糖、无水乳糖、Emprove 低内毒素氯化钾、Emprove 低内毒素甘露醇、Emprove低内毒素甘氨酸均能在适宜条件下制备粉针剂。从节约能耗的角度考虑，Emprove 低内毒素甘露醇、Emprove 低内毒素甘氨酸、Emprove 低内毒素氯化钾、无水乳糖4 种保护剂更为适合选择，尤以Emprove 低内毒素甘露醇为佳。实验研究了Emprove 低内毒素蔗糖、无水乳糖、Emprove 低内毒素葡萄糖、Emprove 低内毒素甘露醇、Emprove 低内毒素山梨醇、Emprove 低内毒素氯化钾、Emprove 低内毒素甘氨酸7 种不同类型常用冻干保护剂作为水溶性药物利巴韦林冻干保护剂的性能，确定了一些基本参数，为水溶性药物冻干粉针剂的制备提供了参考。